【科普】[养猫笔记07]麻醉（Anesthesia）（下）

上的ref见（下）末尾

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2.4 术中监护和并发症（Anesthetic Monitoring and Perioperative Complications）

在围手术期（麻醉的前/中/后阶段）实施密切监测对患者生命安全和维持正常生理功能至关重要，研究显示，监护不足或缺位可使麻醉相关死亡风险增加5-35倍[4]。术中监护可评估麻醉深度的适宜性，并使由于麻醉镇静相关药物或潜在基础疾病对患者引发的生理稳态损伤最小化。此外，其有利于麻醉并发症的早期识别，促使相关人员及时采取干预措施，防止情况进一步恶化。麻醉监护开始时间与患者生理状态有关，通常在诱导后进行（ASA1-2），但对于特殊情况，如患有基础疾病的高风险动物（ASA3-4），则应在诱导前启动相关监护，建立重要指标的基线。

麻醉监护包含麻醉医生的临床观察评估及多参数电子监护仪数据，实现“仪器数据和临床观察互证”的多维监测，具体内容见下文分点详解。

2.4.1 患者临床观察

麻醉医生可通过视、听、触诊等手段，对特定生理学指标进行评估：

—心率：

—呼吸频率和模式：

—脉搏

—黏膜颜色（淡粉色）；

—下颌张力；

—眼睑反射；

—患者体动；

—对手术刺激的反应

2.4.2心血管相关监护指标

（1）心率和脉搏率（HR/PR）

正常静息心率：猫120-180bpm/min

麻醉期间：猫100-180bpm/min

异常：麻醉中<100bpm/min和>180bpm分别与心动过缓（Bradycardia）和心动过速（Tachycardida）有关

通常来说心率和脉搏率一致，当出现心律失常、外周循环障碍等异常时时，可能出现PR<HR或脉搏微弱甚至无法触及。对于该项指标，临床可通过手动触诊、外置听诊器听诊、食道听诊器听诊、多普勒超声、脉搏血氧仪、ECG心电图进行监测，不同方法此处不做展开[2, 7]

（2）毛细血管再充盈时间（Capillary Refill Time，CRT）

主要用于评估末梢循环和微循环功能，通过观察受压部位颜色变化的速度，判断血液是否能有效回流至外周组织。

正常情况下：CRT<2s

当CRT>3s时，提示末梢循环障碍，可能由血容量不足、休克、动脉梗阻等因素引起。猫咪皮肤由于有毛发遮挡，可选择牙龈、眼结膜等毛细血管丰富处替代[2]

（3）血压（BP）

①定义[1, 2]

血压，为全身提供稳定的血流灌注，从而保障心、脑、肾等重要器官/组织供氧充足，是反映心血管系统功能的重要指标。单次心脏收缩产生的动脉压力波形包含三个关键的压力参数：

收缩压（SAP）：压力波形的峰值，反应心脏收缩时动脉壁承受的最大压力

舒张压（DAP）：压力波形的最低值，心脏舒张期 动脉残留的压力值

平均动脉压（MAP）：压力波形曲线的面积积分，为SAP和DAP振荡曲线的平均压力值

其中，MAP是全身器官灌注的主要驱动力，故为三者中最重要的监测参数，MAP与SAP、DAP的计算关系和相关决定因素如下公式所示：

MAP= DAP+1/3（SAP-DAP） （1）

MAP=CO（心输出量）× SVR（全身血管阻力） （2）

CO= HR（心率）× SV（每搏量） （3）

※根据公式(2)(3)，可见MAP与心血管系统功能密切相关，如：

—心肌收缩力，吸入麻醉异氟烷等降低心肌收缩力，从而SV↓CO↓；

—HR，心动过缓或过速均可能影响CO，进而改变MAP；

—SVR：血管收缩或舒张状态直接决定外周阻力，如去甲肾上腺素通过收缩血管增加SVR以维持MAP

其余相关影响因素见图6

图6 MAP影响因素[2]

②指标范围和并发症

I 参考范围[2]

SAP 90 - 140 mmHg 正常血压（健康清醒猫通常在120-140mmHg）

SAP > 160 mmHg 高血压

SAP<90 -100mmHg 低血压

麻醉中血压指标要求：[1, 2, 7]

MAP> 60 - 70mmHg（健康正常动物）；

MAP >70 -80 mmHg（老年患有疾病等动物）

◆当MAP处于80 - 180mmHg时，肾脏血流可通过入球小动脉平滑肌的肌源性反应、管-球反馈机制等维持稳定；但当MAP<80mmHg时，肾血流量失去自我调节能力，将呈现压力依赖性（即随MAP下降而减小），AKI风险增加。因此，一般来说，麻醉中MAP应至少维持在60 - 70mmHg之间，对于高风险患者（如肾病、高血压等），MAP应提高至80mmHg[2]

II术中并发症

（i）低血压（Hypotension）

鉴于麻醉相关药物普遍对心血管系统的抑制性，即使麻醉深度适宜甚至较浅，低血压都是极为常见的并发症。MAP是各器官/组织通过毛细血管进行氧供/营养输送的核心驱动力：对于健康的犬/猫等其他小型哺乳动物，MAP<60mmHg时，内脏器官和外周组织血液灌注显著受限，可能导致细胞/器官整体性缺氧。持续性低血压（数分钟-数小时）会对全身器官功能造成显著影响，可能引起：

—肾衰竭（肾血流低灌注导致急性肾小管坏死）；

—药物代谢与清除延迟（肝脏血流减少抑制代谢酶活性）；

—通气/血流比例失调与低氧血症（肺血管收缩）；

—麻醉苏醒延迟（脑灌注不足延缓麻醉药物的再分布与清除）

部分影响可能直到苏醒恢复期才能显现，比如术后失明（视网膜中央动脉供血不足）、中枢神经系统后遗症（如认知功能障碍），有些病例即使接受支持治疗仍无法完全恢复。持续未纠正的低血压可进展为心脏骤停与呼吸停止[1, 2]。因此，应对所有接受麻醉的猫进行血压监测并记录变化趋势，低血压的定义范围[11]：

SAP< 80-90mmHg，MAP<60-70mmHg，DAP<40mmHg

当血压低至上述范围，需按照治疗流程依次排查，若血压均未能回升，需中止麻醉

（ii）高血压（Hypertension）

MAP>120mmHg（即SAP>140-150mmHg），属于相对少见的麻醉中并发症，通常可能由于麻醉深度不足、疼痛刺激和正性肌力药物使用过量等原因造成，原本具有高血压的患者在麻醉后仍有可能呈现高血压，具体此处略[2]

III血压测量[1, 2, 12, 13]

可分为有创和无创两类，其中有创血压监测（IBP）为血压测量的金标准，具体各优缺点适用场景如下表所示：

表14血压测量方法对比[1, 2, 14,15]

2.4.3呼吸系统相关监护指标

（1）呼吸频率rr和模式

理想的呼吸模式应为规律的胸式呼吸，伴随胸壁的良好运动。喘气可能与麻醉过浅有关（也有可能是麻醉期间体温过高引起），缓慢、浅表的腹式呼吸则提示麻醉过深。

正常的呼吸频率范围：猫12-24 bpm[2, 16]

（2）氧合指标

①定义[2]

氧合状态评估可以通过以下三个指标实现：

动脉血氧分压PaO2:溶解于动脉血浆中的氧分子所产生的压力，反映物理溶解氧的水平，单位mmHg，计算方式：

PaO2= PiO2-1.25PaCO2

PiO2（吸入气氧分压）=（大气压-水蒸气压）×FiO2（吸入氧浓度，空气通常为21%）

血氧饱和度SaO2:氧合血红蛋白（HbO2）占总血红蛋白的百分比，反映血红蛋白的携氧能力，%；

动脉血氧含量CaO2:每100ml动脉血中实际携带的氧总量，包括物理溶解氧和与血红蛋白结合的氧，ml/dl，计算方式：

CaO2 = (1.34 ×Hb ×SaO2)+(0.003 ×PaO2)（Hb为血红蛋白浓度）

麻醉中通常通过SaO2和PaO2对患者术中氧合水平进行评估

②参考范围和并发症

正常范围：

SaO2：>95%

PaO2: >90-100mmHg

低氧血症（Hypoxemia）[2, 7]

正常血氧饱和度需在95%-100%之间，当SaO2低于95%时，需对可能导致低氧血症的原因进行排查；如若SaO2<90%，提示严重低氧血症（在供纯氧下相对少见，常发生于诱导和恢复期），此时需立即进行干预

低氧血症需综合临床观察（人眼只能识别SaO2<75%时的变化）、脉搏血氧仪（SaO2）和动脉血气分析（PaO2，金标准），单凭SaO2>95%无法直接进行判断，这是因SaO2对低氧分压的敏感性较差造成，如图7所示的氧离曲线：PaO2>100mmHg，曲线平坦，SaO2几乎保持不变； 直到PaO2低于60mmHg时，饱和度才下降至90%。 即，脉搏血氧仪显示SaO2>95%，仅可推断患者PaO2约≥100 mmHg，此水平的血氧饱和度在血红蛋白浓度及血压正常时，足以维持组织氧供；但若不结合血气分析，则无法监测患者吸纯氧（FiO2=100%）时的理想PaO2（500-600 mmHg）与维持正常氧饱和所需最低PaO2（90-100mmHg）之间的氧合趋势变化（如患者术中肺功能恶化引起PaO2 500→100mmHg），掩盖可能的潜在风险，延误低氧血症的早期发现。因此，当SaO2正常但怀疑氧合不稳定时，需定期进行血气分析

图7氧离特性曲线[2]

（3）呼气末二氧化碳ET-CO2[2, 7, 11]

可通过呼气末二氧化碳监测仪检测，猫正常范围30-40mmHg，若读数持续高于此范围，可能提示通气不足（Hypoventilation，严重通气不足ETCO2>60mmHg）、CO2生成增加（发热引起），或CO2清除障碍（如RC回路的CO2吸附剂失效、单向阀故障/NRC回路中新鲜气流流速过低无法充分排出呼出CO2等），导致高碳酸血症（Hypercapnia）。反之，读数低于该范围则可能与过度通气（Hyperventilation，严重过度ETCO2<20mmHg）等有关，引起低碳酸血症（Hypocapnia）。

2.4.4其他相关指标

体温T[1, 2]
麻醉中正常核心体温：36°C（97°F）-40℃（104°F）

低体温（Hypothermia）[2]

低体温<36°C（97°F）是全身麻醉（长时间手术）的常见并发症，猫高体表面积/质量比的特点，使其出现体温过低的概率更高。

围手术期低体温是多重机制共同作用的结果：①麻醉药物；抑制体温调节中枢，引起血管扩张，降低动物代谢速率，产热减少②动物正常行为反应丧失；麻醉状态下动物无法自主调节体温（如蜷缩等）③手术操作和环境因素；口腔湿润（牙科手术）/体腔开放（腹腔手术），手术室温度较低21-24℃，接触冷表面（金属手术台等），热量流失↑。

低体温可引起免疫和凝血功能抑制，术中感染/心律失常等风险增加，MAC值下降（麻醉药物过量风险↑），肝肾血流减少（药物清除↓，恢复延迟），术后寒战颤抖（需氧量激增）等不良后果。因此，除持续监测外，还应通过主动保温技术（强制加热装置、医用级电热毯等），优化手术管理（限制剃毛区域、呼吸回路加温加湿、治疗液体加温…）等措施提高环境温度，减少热量丢失，预防术中低体温的发生

过高热/体温过高（Hyperthermia）[2]

一般较低体温的发生率更低。所有阿片类药物均可导致猫的体温升高，尤其是μ受体激动剂，可能在麻醉恢复期诱发高热。这类体温升高通常是自限性的：但当体温>40℃时，需启动物理降温措施；若体温继续升高至41℃，应考虑使用对应拮抗剂逆转该效应（需同步调整镇痛方案）

2.4.5麻醉记录[2, 15]

完整麻醉记录可记录动物生命体征并协助尽早识别生理变化趋势，通常建议每5分钟记录一次相关监测参数（心率、呼吸频率、血压、血氧饱和度、ETCO2、体温）。除指标变化外，还应对使用药品、器械及特殊事件（包括镇静麻醉用药类型/给药途径/剂量、静脉导管/气管插管等器械参数、液体治疗、恢复时间及术中并发症的处理操作…）做好记录，以便为患者后续的麻醉诊疗提供参考，常见麻醉记录表如图8[17]

图8麻醉记录[17]

2.5术后恢复（Recovery）

（1）定义

麻醉恢复期是指从停止麻醉给药到患者恢复咽反射或吞咽反射、拔除气管插管ETT、恢复意识、保持胸卧位和/或恢复行走能力的整个过程，最佳恢复时间大约为15-30min。实际麻醉苏醒时间则受多种因素影响，包括动物健康状况、体温、所用麻醉药物及麻醉时长等。一般而言，基础疾病（如衰弱性疾病）、低体温、麻醉过深以及长时间手术操作常导致苏醒时间延长[2, 7]。

（2）恢复期监护与护理

前文2.4为麻醉必须监护指标和常见并发症，需要注意的是，由于术后恢复为高危时期（前文可知相当一部分麻醉相关死亡发生于术后前3h内），监护职责并不在停止吸入麻醉给药后终止，而是需一直持续至患者完全脱离麻醉状态（即维持正常T/HR/RR；无咳嗽或上呼吸道杂音；无无意识划动或肌肉强直；无躁动或异常嚎叫；并恢复胸卧位），且为确保必要时可及时给予镇静剂、镇痛剂和急救药物等，静脉导管需保留至患者拔除气管插管、生理指标正常后。恢复期需要重点关注如下相关指标，并按需给予支持性护理[2]：

—心血管系统状态：评估黏膜颜色、CRT、HR/心音及BP；

—呼吸系统状态：肺部听诊，监测RR/呼吸模式，由于麻醉苏醒早期常伴随呼吸抑制，可能导致高碳酸血症和低氧血症（引发脑功能障碍甚至呼吸骤停），拔管前可在ETT末端保留二氧化碳分析仪持续监测通气情况，并使用脉搏血氧仪监测SaO2，必要时，可使用动脉血气分析联合评估氧合状态；

—镇痛效果：采用疼痛评分系统并采用合理充足的疼痛管理方案；

—体温：根据需求实施保温/降温措施；

—气管插管耐受性：观察咽反射和吞咽功能的恢复情况；

—异常行为：麻醉恢复期间可能会出现谵妄或烦躁不安等不良反应

除上述监护要点外，麻醉平稳顺利恢复受环境因素影响，黑暗安静温暖的苏醒环境有利于缓解患者的焦虑，强光/噪音/低温则会加剧术后不适。此外，对于膀胱显著充盈，或手术/疾病限制其自主使用猫砂盆的动物，可在其恢复意识前谨慎实施膀胱按压排尿以缓解不适。随着患者意识恢复和自主控制能力增强，可逐步降低监护强度，麻醉恢复期间的生理指标变化和用药均需记载于麻醉记录上[7, 11]。

（3）延迟恢复和其他术后并发症[7]

恢复时间延长通常与麻醉过深、低体温、低血容量、低血糖、缺氧等相关，处理流程见下图所示，注意，逆转阿片类等药物时，必须额外规划疼痛管理方案

图9 麻醉延迟恢复处理流程[7]

除苏醒推迟外，恢复期常见的并发问题还包括病理性烦躁焦虑（Dysphoria）和苏醒期谵妄（Emergence delirium），推荐治疗流程如下图9

图10 术后极度烦躁焦虑不安处理流程[7]

2.6家中护理[10, 18]

动物出院后，整个麻醉过程完成闭环，但并不意味着对患者的护理同样到此结束，根据手术类型时长等的不同，应对家长提供对应的术后护理指导，通常包含动物因麻醉手术操作等导致的问题（如呕吐、兴奋焦虑不安、昏睡虚弱步态不稳等）、手术部位护理要求（消毒等）、大致术后恢复时间、饮食建议（给食/水时间、食物种类、给食/水量）、术后药物处方（常见的如镇痛非甾体、止吐药马罗匹坦及镇静/抗焦虑药等）、排泄、护理环境和活动限制建议等，有利于缓解患者术后不适，促进恢复。

此外，除遵医嘱，家长应对动物日常行为、基本体征等进行观察，以便尽早识别术后并发症，及时处理避免病程恶化。在家护理发现如下情况时，需立即联系VET咨询，必要时前往就医，包括：

●伤口出现红肿、分泌物或缝线崩开，或有恶臭异味；

●极度烦躁和不适持续超过2h；

●呼吸困难、静息状态下呼吸持续急促、呼吸模式不稳定/有杂音、腹式呼吸；

●口腔黏膜颜色苍白或发绀；

●体温持续低于37℃

●持续眯眼超过1h；

●身上出现新伤口；

●拒食/拒水超过12h，超过48h食欲不振；

●超过48h内未排便，24h未排尿；

●持续超过24h的排尿量异常显著增大/减少，或尿液颜色异常，黏膜干燥，皮肤回弹延迟；

●持续腹泻超过12h；

●持续性的呕吐（12h内≥3次）；

●频繁碰撞物品；

●行走或跳跃困难；

……

以上异常症状主要围绕心肺、疼痛管理、胃肠道、肾和神经等术后并发症

3.患基础疾病或特殊类型动物的麻醉

针对患有不同疾病和不同类型的患者（包括患有心血管疾病、呼吸系统疾病、神经系统疾病、肝病、消化道疾病、内分泌疾病、肾病、肾后泌尿系统疾病以及妊娠期/新生儿/老年动物），麻醉管理方案和注意事项各有差异，由于篇幅限制，本部分仅阐述肾病患者麻醉管理要点，其余按需自行查阅ref

3.1肾脏疾病动物麻醉

肾脏疾病/相关功能损伤在猫科动物中高发，尤以老年动物为甚。流行病学显示，猫群总体患病率约为1-3%，20%的猫在其一生中会受慢性肾病CKD困扰，15yr+猫CKD发病率可达35-80%。患肾病的（老年）动物需要进行麻醉手术/检查在动医临床中十分常见，如老年肾病动物牙科手术（牙龈炎牙周炎牙吸收口炎等），因此，了解相关麻醉管理要点对肾病动物家长有重要意义。（注：此处仅叙述肾脏疾病，pre/post-renal不做展开）

3.1.1肾病患者与麻醉概述

（1）肾脏血流RBF与肾小球滤过率GFR

肾脏血流RBF由外在神经和激素调控以及内在自我调节机制共同控制。肾脏血管系统受交感神经系统高度支配，并在多种生理条件下（如压力）收缩肾脏特定区域的血流。前文提过，RBF的自我调节机制在平均动脉压MAP处于80-180mmHg时生效：MAP升高/降低时，入球小动脉平滑肌通过收缩/舒张调节血管阻力，进而调控肾脏血流量相对减小或增大，维持肾小球血管血压稳定，GFR相对恒定。超过上述范围，肾脏自我调节能力丧失：MAP<80mmHg，肾小球舒张达到极限，RBF和GFR随血压线性急剧下降，导致低灌注，少尿甚至无尿，可能引发急性肾小管坏死；MAP>180mmHg时，引起入球小动脉硬化。肾脏接受20-25%的心输出量，且耗氧量高，故在组织供氧不足时极易受缺血损伤（如呼吸抑制/心输出量不足/肾脏灌注不足等）[2]

（2）肾病患者麻醉耐受差的原因[1, 2]

导致肾病患者麻醉风险较高的因素主要有以下几点：

麻醉镇静/镇痛药物与手术操作：

●全身麻醉/镇静药物均对交感神经/心血管/呼吸系统具有不同程度的抑制作用，引起心输出量降低，血压下降，肾脏易缺血缺氧灌注不足；

●麻醉药物本身或其代谢产物具有一定肾毒性（如七氟烷接触脱水二氧化碳吸附剂生成具有对大鼠有肾毒性的CompoundA），且不同程度的经肾脏代谢或排泄；

●围手术期压力、疼痛、酸中毒等事件刺激体内儿茶酚胺、前列腺素等释放显著增加，醛固酮-肾素-血管紧张素系统激活，引起肾血管收缩，RBF↓；

●缺血-再灌注损伤，术中低血压后恢复血流可能引发氧自由基爆发，导致肾小管上皮细胞坏死

肾脏疾病引起的生理变化影响：

●氮质血症（血液中尿素、肌酐等含氮代谢废物蓄积状态）

①本身对中枢神经系统CNS具有抑制作用，可与麻醉药物抑制作用产生协同叠加效应；

②常伴随代谢性酸中毒，pH↓，降低药物与血浆蛋白（如白蛋白）的结合能力，血浆中游离活性药物含量增加，药物过量风险增。酸中毒可能引起肝脏血流减小，药物清除率下降；

●低蛋白血症：肾病动物（尤其是肾小球病变）白蛋白水平通常降低，游离高度蛋白结合药物浓度增加，过量风险↑

●高钾血症：可能引发心动过速甚至心脏骤停；

●依赖肾脏代谢的麻醉药物/其代谢产物在肾功能不全时半衰期延长，且有蓄积风险；

●甲亢、高血压、贫血等为肾病动物的常见合并症，麻醉风险↑

……

3.1.2肾病患者术前准备

（1）术前检查

必须检查的指标包括HCT（血常规），ALB/TP/BUN/CREA（生化），USG/UPC（尿检），BP，K+/pH（血气），以及尿量评估[1]

详情见笔记03CKD此处不再重复，注意肾病猫常并发其他疾病，术前体检应对患者进行综合全面的评估

（2）患者术前治疗和稳定

对肾病动物而言，麻醉前稳定体况比选择合理麻醉药物方案对手术是否顺利成功的影响权重更高。总体而言，此类患者需要评估和对应纠正的重要参数主要为水合状态、循环血容量、总蛋白/白蛋白水平、红细胞压积、血钾等电解质、酸碱平衡，相关液体治疗方法如下：

①静脉补液—平衡等渗晶体液（如乳酸钠林格）：维持良好血容量，优化肾脏灌注，使动物进入轻度利尿的状态（目标为尿量1.0-2.0ml/kg/h），改善动物水合状态，降低术中肾损伤风险，减小肾病进展的概率。具体补液方案：

I严重低血容量： 初始治疗策略为猫5-10ml/kg 15-30min快速推注等渗晶体液，以恢复有效循环血容量。随后查看生命体征，若恢复正常，则可评估脱水程度

II脱水： 理想状态下，肾病猫应在麻醉前12h-24h（程度严重的可延长至48h）内缓慢进行静脉补液（起始维持速率2ml/kg/h），完成脱水问题的纠正。当然实际输注速率和补液量应根据患者个体情况进行灵活调整（脱水程度、肾病类型，心肾功能等）——按需提高或进一步降低，没有万能的补液速率！除基础维持量（40ml/kg/day or 30×BW+70 ml/day）外，还应考虑脱水时液体丢失量（液体丢失量/ml=体重/kg ×脱水百分比X/%）和，如轻度脱水7%的5kg猫，液体丢失量为350ml。对于少尿/无尿期肾病的患者，应谨慎计算避免液体过载[2, 13]

②静脉补液—胶体液：针对低蛋白血症（可使药物过量风险增加，血浆胶体渗透压COP↓，血管内液体渗入组织间隙，血容量↓）。当胶体液和晶体液联合使用输注时，晶体液总量通常减少40-50%。胶体液用量一般不超过50ml/kg/day[2]

③输血：肾病常伴随贫血，HCT<18-20%的患者需积极考虑术前输血，尤其是预期失血风险较高的手术操作，以增加血液的携氧能力[1]

④静脉输注—0.9%NaCl/葡萄糖酸钙/葡萄糖-胰岛素联用/碳酸氢钠：针对高钾血症，原理为稀释血钾浓度/将血清中K+驱入细胞内以降低血管内浓度。当K+>5.5mEq/l时，需纠正血钾水平。轻/中重度高血钾可分别采取不同程度的纠正措施，e.g.轻度（K+ = 5.5-6.0mEq）通常可用用0.9%NaCl补液稀释血钾浓度，中重度（K+>6.0mEq）则需考虑葡萄糖-胰岛素疗法，如果并发酸中毒，需联用碳酸氢钠碱化促进血液和细胞的H - K交换以钾[1, 2]

3.1.3肾病患者的麻醉管理

（1）麻醉药物方案

肾病猫的常用推荐组合为[1, 2, 19]

苯二氮䓬类、阿片类药物+ 丙泊酚/阿法沙龙 +异氟烷

（地西泮/咪达唑仑、布托啡诺/pure μsrds大部分只能搞到布托）

Premedication + Induction + Maintainance

▲注[1, 2]：

*Acepromazine最好只用于稳定代偿期肾病，低剂量时可能具有肾脏保护作用；

*α2受体激动剂慎用于肾损患者，最好仅用于年轻早期肾病患者，尤其是当苯二氮䓬类联用阿片镇静作用不足需使用右美等时；对低灌注急性肾损可能有益；引发显著利尿作用，尿梗阻/低血容量动物慎重

*短时镇静（1-2.5h）时苯二氮䓬类优先米达唑仑，地西泮不溶于水，其静脉制剂含有丙二醇，可能引起近端肾小管损伤或坏死；咪达唑仑可溶于水，安全性较地西泮高，但对肾功能不全者，仍需关注代谢产物蓄积风险；

*术前可静推马罗匹坦预防术中及术后呕吐；

*由于肾病猫常伴随低蛋白血症/代谢紊乱，免疫力下降，尤其面对某些高风险手术（如泌尿系统手术/破坏黏膜屏障的手术），可按需在术前预防性使用广谱抗生素（避免使用肾毒性药物如氨基糖苷类抗生素等！）

*慎用NSAIDS

*具体麻醉方案还需兼顾其他存在疾病、药物可用性以及麻醉医生惯用药物灵活选择
（2）麻醉中维持和管理

肾病动物应将麻醉时间控制在最低限度，具体监护和管理相关要点包括：

①监护[1, 2]

除了上文常规监护内容，针对肾病猫相关检测指标变化：

I平均动脉压—MAP >70 -80 mmHg，对于并发高血压的肾病动物，MAP需接近麻醉前测量数值（波动幅度20%内），以维持肾脏灌注

II进阶监测—中心静脉压（Central venous pressure，CVP），对于危重动物，可通过颈静脉导管测量CVP，作为血容量的间接评估指标以指导术中静脉输液速率。犬猫CVP的正常范围在3～5 cmH2O之间，若CVP升至10cmH2O以上，提示心肌功能不足或液体过载，此时应降低输液速率/停止输液，若停液后CVP回落，则可以更低的速率维持输液。

III进阶监测—心输出量测量，可反映前负荷/每搏量/全身血管阻力等，具体可分为有创和无创，此处不做展开

②液体和药物治疗

I术中可继续补液改善肾灌注和维持血流

II在围麻醉期间，通过药物调节心血管和肾脏生理功能可能对肾病患者有利。甘露醇作为一种渗透性利尿剂，其可自由经过肾脏而不被重吸收，故在肾小管和体循环中发挥着渗透剂的作用，输注给药时可诱导肾动脉扩张，降低血管阻力和血液粘度，改善肾脏血流，清除氧自由基。在人类肾脏移植中，甘露醇作为肾脏保护剂降低移植后AKI和的移植肾功能延迟恢复发生率，此外，其还可通过预防肾小管坏死减少含碘对比剂肾病（Contrast-induced nephropathy，CIN，对比剂常用于如血管造影等医学影像检查）的发病率。对于猫，甘露醇静脉输注500mg/kg联合CRI（1mg/kg/min）可能提升RBF[20]；在AKI中，可诱导全身血流重新分布至肾脏促使尿量增加。然而，高剂量使用时导致渗透性肾病，血容量骤增易引发心力衰竭，慎与其他利尿等药物联用，慎用于低血容量、急性肺水肿等患者[1]

3.1.4麻醉后恢复

AKI和CKD的急性进展是肾猫麻醉后的可能出现的重要并发症，常见特征为尿量急剧下降（<0.5ml/kg/h）、呕吐等。当然，受麻醉药物和体液丢失的影响，术后少尿常见，但此类少量一般不会超过24h，故出现持续性少尿甚至无尿，需考虑AKI或肾病病程进展的可能性，及时就医，进行液体治疗纠正电解质紊乱等，最大程度降低慢性损伤[1]

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Reference

[1]LamontL,GrimmK,RobertsonS, et al.Veterinary Anesthesia and Analgesia: The Sixth Edition of Lumb and Jones.John Wiley & Sons, 2024, p1-1157.

[2]Lesley JS.Questions andAnswers inSmall AnimalAnesthesia.John Wiley & Sons. 2016, p1-192.

[3]BrodbeltDCet al.Risk factors for anaesthetic-related death in cats: resultsfrom the confidential enquiry into perioperative smallanimal fatalities (CEPSAF).British Journal of Anaesthesia. 2007,99 (5),617–623.

[4]MatthewsNS,MohnTJ, et al.Factors associated with anesthetic-related death

in dogs and cats in primary care veterinary hospitals.Small Animals & Exotic.2015, 250(6), 655-665.

[5]Bille C, Auvigne, V, et al.Risk of anaesthetic mortality in dogs and cats: an

observational cohort study of 3546 cases.Veterinary Anaesthesia and Analgesia, 2012, 39, 59–68

[6]RedondoJI,Martínez-TaboadaF, et al.Anaesthetic mortality in cats: A worldwide analysis and riskassessment.Vet Rec. 2024, 195, e4147.

[7]RobertsonSA,GogolskiSM, et al.AAFP Feline AnesthesiaGuidelines.Journal of Feline Medicine and Surgery.2018,20, 602–634.

[8]Hovi-Viander M.DEATH ASSOCIATED WITH ANAESTHESIA IN FINLAND.BRITISH JOURNAL OF ANAESTHESIA.1980, 52, 483-489.

[9]WangY,WangJ,YeX, et al.Anaesthesia-related mortality within 24 h following9,391,669anaesthetics in 10 cities in Hubei Province, China: aserial cross-sectional study.Lancet Reg Health West Pac. 2023, 15(37),100787.

[10]Mali S. Anaphylaxis during the perioperative period. Anesth Essays Res. 2012, 6(2), 124-33.

[11]GrubbT,SagerJ,GaynorJS, et al.2020 AAHA Anesthesia and Monitoring Guidelinesfor Dogs and Cats.J Am Anim Hosp Assoc.2020, 56(2), 59-82.

[12]Quimby JM, Jones SE, Saffire A, Brusach KK, Kurdziel K, George Z, Paschall RE, Aarnes TK. Assessment of the effect of gabapentin on blood pressure in cats with and without chronic kidney disease. J Feline Med Surg. 2024, 26(5).

[13]PardoM,SpencerE, et al.2024 AAHA Fluid Therapy Guidelines for Dogsand Cats.J Am Anim Hosp Assoc.2024, 60(4), 131-163.

[14]CernaP, ArchontakisPE, et al.Comparison of Doppler ultrasonicand oscillometric devices (with orwithout proprietary optimisations)for non-invasive blood pressuremeasurement in conscious cats.Journal of Feline Medicine and Surgery. 2021, 23(2),121 –130.

[15]JepsonRE, et al.A comparison of CAT Doppler and oscillometricMemoprint machines for non-invasive bloodpressure measurement in conscious cats.Journal of Feline Medicine and Surgery.2005,7, 147-152.

[16]Anesthetic Monitoring: Devices to Use and What the Results Mean.Available at:https://todaysveterinarypractice.com/anesthesiology/anesthetic-monitoring-devices-to-use-what-the-results-mean/. Accessed at Apr 28, 2025.

[17]Anesthesia Records and Checklists. Available at:https://ava.eu.com/resources/checklists/. Accessed at May 3, 2025.

[18]Anesthesia Discharge Template. Available at :https://www.aaha.org/resources/2020-aaha-anesthesia-and-monitoring-guidelines-for-dogs-and-cats/anesthesia-discharge-template/. Accessed at May 3, 2025.

[19]HughesJML.Anaesthesia for the geriatric dogand cat.Irish Veterinary Journal. 2008, 61(6), 380-387.

[20]McClellan JM, Goldstein RE, Erb HN, et al. Effects of administration of fluids and diuretics on glomerular filtration rate, renal blood flow, and urine output in healthy awake cats. Am J Vet Res 2006,67(4),715–722.